Diagnostic de maladies virales émergentesDiagnostic des virus hautement pathogènesInformatique de laboratoire pour le service de Virologie

Semestres 7 & 8 d'internat - Virologie Spécialisée - Formation continue en virologie spécialisée au sein du Laboratoire de Virologie du CHU de Grenoble. - Participation à la validation des EBM (Examens de Biologie Médicale) de routine et spécialisés en virologie en renforcement d'une équipe de 7 biologistes - Participation aux projets de transformation du laboratoire : réorganisation, mutualisation et automatisation des techniques et postes - Participation à la formation des externes en médecine et des internes de biologie médicale en virologie - Rédaction d'une thèse de médecine portant sur l'exploration métagénomique du microbiote respiratoire chez le patient atteint de mucoviscidose

Semestre 6 d'internat : Pharmacologie, toxicologie et pharmacogénétique - Formation aux méthodes de screening toxicologique (LC-UV, LC-DAD, LC-MS/MS, GC-MS/MS) - Validation des examen de routine en pharmacologie et pharmacocinétique (antibiothérapies, antifongiques, ...) - Mise au point de méthodes : dosage d'anticorps monoclonaux thérapeutiques en HPLC couplée à la spectrométrie de masse en tandem (LC-MS/MS) - Application de nouvelles méthodes de dosages à la recherche clinique : Suivi thérapeutique pharmacologique des anticorps anti-TNFalpha (Infliximab, Adalimumab) dans les Maladies Inflammatoires Chroniques de l'Intestin (MICI) - Application de modèles de pharmacocinétique de population pour le suivi thérapeutique pharmacologique des anticorps thérapeutiques monoclonaux

Semestre 5 d'internat : Virologie spécialisée - Formation aux techniques de biologie moléculaire (PCR, qPCR, RT-PCR, PCR multiplexes, ...) et leur application à l'exploration des pathologies virales (détection, quantification, ...) - Validation des examens de routine en sérologie virale - Validation des examens spécialisés en biologie moléculaire (charges virales par PCR, PCR multiplex, génotypage viral et séquençage de recherche de résistance) - Participation aux Réunions de Concertation Pluridisciplinaires (RCP) virales (VIH, Hépatites)

Semestre 4 d'internat : Bactériologie & Virologie Générale - Validation des examens de routine (ECBU, hémocultures, antigènes légionelle, prélèvements bactériologiques autres ...) - Formation technique à l'ensemencement, la gestion des prélèvements, l'isolement et l'identification bactérienne et réalisation d'antibiogrammes (en diffusion et en milieu liquide). - Formation à l'identification bactérienne en spectrométrie de masse (MALDI-TOF) - Participation à l'automatisation du laboratoire (déploiement d'une chaîne de gestion des prélèvement automatisée BD-Kiestra) - Formation aux techniques de sérologies bactériennes et virales

Semestre 3 d'internat: Immunologie, exploration de l'auto-immunité - Validation des examens de routine dans le secteur d'auto-immunité - Formation à la microscopie à fluorescence et à la technique d'immunofluorescence directe et indirecte - Découverte des secteurs d'exploration du complément et de l'immuno-allergologie

Semestre 2 d'internat : Hématologie cellulaire, Hémostase - Formation aux examen de routine et spécialisés en Hématologie cellulaire - Formation aux examens de routine et spécialisés en Hémostase - Validation des examens de routine dans ces deux secteurs - Participation à la procédure d'accréditation à la norme ISO 15189 des analyses concernées avec rédaction des procédures qualité

Semestre 1 d'internat : Biochimie générale - Formation aux différents EBM (Examens de Biologie Médicale) et à leurs techniques d'analyse en biochimie - Validation biochimique de routine - Validation de méthodes dans le cadre de l'accréditation à la norme ISO 15189 version 2012 : rédaction des dossiers de validation de méthode de 32 analyses spécialisées en portée A dans un secteur de RIA (radio-immuno analyse). Réalisation des tests de validation de méthode (reproductibilité, répétabilité, ...) et mise en place des points critiques 'Qualité' (calcul des incertitudes, suivi des réactifs et contrôles de qualité, ...). Rédaction des procédures qualités associées

Etude de la flexibilité et de la dynamique protéique par spectroscopie RMN (Résonance Magnétique Nucléaire).Mon travail porte sur la caractérisation des interactions entre les composants de la polymérase du virus de la grippe (Influenza A) et leurs partenaires de la cellule hôte. En particulier sur les mécanismes qui sont à l'origine de l'adaptation inter-espèce et qui permettent le passage du virus du tractus digestif des oiseaux aux voies respiratoires supérieures de l'homme.Les techniques utilisées comportent la production de protéines et de différentes constructions ainsi que leur purification. Un grande partie des données est acquise sur les spectromètres RMN de l'Institut.

Assistant chercheur dans un laboratoire du Département de Biochimie de l'Université de Cambridge.Caractérisation des sites de liaison des intégrines au collagène à l'aide de Toolkits développés au sein du laboratoire. Liaison de l'intégrine α1β1 à la matrice de collagène et reconnaissance de sites spécifiques.