Philippe Nizard Email and Phone Number

UMR 8601- Nano Bio-Spectroscopy groupThe research activity of the group is at the interface of nanoscience, spectroscopy, and biomedicine. Design of innovative nanoscale hybrid materialsAdvanced nanotechnology for drug delivery, diagnostic and theranostic Main collaborations : ITODYS Laboratory / MSC Laboratory

Au sein de l’équipedéveloppement , mise en place et suivi de la plupart des projets de l’équipe et ceux des collaborations externes. Responsable de deux plateformes microfluidiques développées au laboratoire et des outils ou technologies associées : optique, lithographie, microfabrication, détection et traitement du signal.Encadrement de stagiaires et d’étudiants de licence de master et de thèse.Mise en place de nouvelles technologies au sein du laboratoireEncadrement de stagiaires et d’étudiants de la licence à la thèse.Formation des nouveaux arrivants dans le laboratoire.Coordination des différentes équipes impliquées dans les projets de recherchemobilisation des ressources nécessaires au projet mise en place de réunions de suivi des projets.Participation au recrutement et à l’évaluation des personnels techniques.Au sein de l’unitéen interaction avec différentes personnes de l’unité, encadre et gére des projets de recherche en toxicologie et en cancérologie.membre du conseil d’unité du laboratoire, responsable de la salle de culture cellulaire, sécurité laser. Création de la plateforme eDIAG en collaboration avec la SATT-INNOV. Cette plateforme a pour but de valoriser les compétences scientifiques et technologiques développées dans l’unité dans la caractérisation moléculaire de cancers de la tumeur à l’ADN circulant et dans les nouvelles méthodes hautement sensibles de détection et de quantification d’acides nucléiques.EnseignementMembre de l’équipe pédagogique de biologie de la licence Frontière Du Vivant. Création de cours et TDs, de TPs pour les L1 et L2. Participation à l’évaluation des étudiants. eEncadrement des élèves de collège (Stage de découvertes de 3eme) ou de lycée (Sciences Académie) pour des stages de découvertes courts (1 semaine).

Mise au point d’un crible kinase par une approche en RNA interférant suivi d’une analyse multiparamétrique en microscopie. J’ai développé un crible siRNA de 714 kinases au format 96 puits et développé les outils d’analyse multi-paramètriques en microscopie. Après avoir mis au point et réalisé la partie expérimentale du crible j’ai développé un système automatique d’analyse d’images à l’aide de logiciels comme Image J et Cell Profiler. L’analyse statistique des données a été réalisée en collaboration avec les mathématiciens pour mettre en évidence les kinases qui jouent un rôle dans la progression du cycle cellulaire et plus particulièrement dans la mitose. L’une des applications biologiques de ce projet est de déterminer les étapes fragiles du cycle et de mettre en place des stratégies d’inhibition de la prolifération maligne.Responsabilités : gestion du projet et des collaborations (Institut de Recherche Mathématiques de Rennes (IRMAR), Institut National de Recherche en Informatique et Automatique (INRIA) et l’équipe Signalisation et Réponses aux Agents Infectieux et Chimiques (SERAIC) de l’UPRES EA). Réalisations : conception d’un crible en siRNA au format 96 puits (714 kinases cibles avec 3 siRNA différents pour chacune des cibles). Automatisation du traitement et de l’analyse des images en microscopie à fluorescence.Financements : CNRS et Université de Rennes 1

Développement de tests biochimiques et cellulaires pour l’étude du trafic de protéines de type chaperon et développement de vecteurs peptidiques appliqués à l’immunothérapie anti-cancéreuse.Initialement recruté pour un contrat de 3 ans, j’ai été reconduit pour deux années supplémentaires. J’ai participé à plusieurs des projets de recherche de l’équipe « Homéostasie Intracellulaire des Protéines ». J’ai plus particulièrement pris en charge deux axes de recherche : le traffic intra- et extra-cellulaire de protéines de types chaperon et le développement d’un système de vectorisation peptidique. Pour ces deux projets j’ai développé les stratégies de clonage de production et de purification de protéines recombinantes dans des cellules eucaryotes. J’ai ensuite développé les tests biochimiques et cellulaires pour la caractérisation du traffic des protéines (Western Blots, transcription traduction in vitro S35, imagerie, cytométrie). Dans le cadre d’une collaboration du Cancéropôle Grand Ouest, j’ai également collaboré avec des équipes d’immunologistes pour le développement de tests de vectorisation peptidique sur des cellules primaires. Au cours de cette expérience professionnelle j’ai encadré chaque année un étudiant de Master 2. Au sein de l’unité j’étais responsable de l’appareil de chromatographie liquide ÄKTA-explorer (GE Healthcare) et correspondant cytométrie en flux. Réalisations : production et expression de protéines recombinantes, développement de tests biochimiques et cellulaires pour l’étude du trafic de protéines chaperon et pour le développement d’un système de vectorisation d’antigènes tumoraux vers les cellules dendritiques. Responsabilités : gestion de projets et de collaborations (Cancéropôle Grand-Ouest axe Vectorisation ; Université de Wollongong), encadrement, demandes de financements, gestion du laboratoire, responsable de la plateforme purification des protéines et correspondant cytométrie en flux. Financements : CNRS et Université de Rennes 1

Optimisation d'une voie de biosynthèse chez la levure.Dans le cadre d’une collaboration entre le CNRS et la société Aventis Pharma, j’ai été recruté sur un poste de chargé de projet. Le projet consistait à optimiser une voie de biosynthèse chez la levure et à développer des stratégies de mutagenèse semi-aléatoire. Mon travail a consisté en la gestion des quatre ingénieurs d’étude du partenaire public et de faire le lien avec le partenaire privé sous forme de rapports et de réunions mensuelles.Réalisations : développement d’une approche de mutagenèse semi-dirigée sur des cytochromes P450.Responsabilités : gestion de projets et des collaborations (Aventis), rapports mensuels sur l’activité Financement : CNRS-Aventis Pharma

Développement d’outils moléculaires pour l’étude de la réponse inflammatoire à l’uranium J’ai effectué mon service militaire en tant que scientifique du contingent pendant 9 mois. Dans un premier temps J’ai installé un laboratoire de biologie moléculaire (achat du matériel, PSM, incubateurs, appareil PCR, etc). Puis j’ai développé et élaboré des tests de gènes rapporteurs pour l’étude des effets de l’uranium sur la synthèse de cytokines pro-inflammatoires par le macrophage de l’alvéole pulmonaire. L’équipe était restreinte à un chercheur et un étudiant en thèse que j’ai formé aux techniques de la biologie moléculaire.Réalisations : développement de tests biochimiques et cellulaires, gènes rapporteurs.Responsabilités : installation d’un laboratoire de biologie moléculaire. Financement : « scientifique du contingent » (Ministère de la Défense-CEA)

Mise au point et caractérisation d’une ancre membranaire dérivée de la toxine diphtérique pour le développement d’une stratégie d’immunothérapie anti- cancéreuse.Au cours de la thèse, J’ai participé au développement d’une ancre membranaire utilisant la capacité d’insertion, à pH acide du domaine T de la toxine diphtérique dans les membranes. Il s’agissait d’une méthode originale visant à ancrer des ligands protéiques solubles à la surface de membranes synthétiques ou cellulaires. Après avoir fabriqué les systèmes d’expression des protéines recombinantes chez la bactérie, j’ai mis au point les conditions d’expression et de purification de ces protéines en chromatographie d’affinité. J’ai ensuite caractérisé l’ancrage de la protéine à des membranes synthétiques et cellulaires par des méthodes d’immunofluorescence (ELISA, microscopie, cytométrie en flux). J’ai ainsi déterminé les conditions optimales pour l’ancrage des protéines à la surface des cellules grâce à ce sytème. Plus particulièrement, j’ai montré que l’IL-2, même ancré de cette manière, conservait ses propriétés immunostimulantes d’abord en développant un test de stimulation d’une lignée IL-2 dépendante, puis en important et en développant au laboratoire des tests de vaccination anti-tumorale chez la souris en collaboration avec l’unité INSERM 487. Au cours de ces travaux j’ai encadré chaque année un étudiant de BTS en spécialisation et un étudiant de Master 2. J’ai également enseigné en tant que vacataire à l’IUT de Créteil en dernière année de thèse.Responsabilités : gestion de projets et de collaborations, encadrement / formation.Réalisations : développement de tests biochimiques et cellulaires, production de protéines recombinantes, tests immunologiques chez la souris.Financement : allocation du Ministère de la Recherche